Agroerdészeti rendszerekben termelt mezei sóska (Rumex acetosa L.), lándzsás útifű (Plantago lancelota L.) és kis télizöld (Vinca minor L.) antioxidáns összetételének vizsgálata

Main Article Content

Hofmann Tamás
Benke Dénes
Visiné Rajczi Eszter

Absztrakt

Jelen munkában a Bajti Nemesítő Telep agrárerdészeti rendszerében, különböző talajtakarási módszerekkel (mulcs, méhlegelő, geotextília) termesztett három gyógynövényfaj: a mezei sóska (Rumex acetosa L.), a lándzsás útifű (Plantago lancelota L.) és a kis télizöld (Vinca minor L.) antioxidáns kapacitásának, polifenolos összetétének és szerves savtartalmának összehasonlító vizsgálatát végeztük el. Azt vizsgáltuk, hogy a különböző talajtakarásoknak van-e valamilyen előnyös hatása a növények antioxidáns tartalmára, mely a jövőbeli élelmiszeripari, humán táplálkozási vagy gyógyszeralapanyagként való hasznosítás szempontjából a legelőnyösebb. Az antioxidáns kapacitást a TPC (Folin-Ciocalteu féle összes polifenol tartalom), a FRAP (vas(III)-ion redukálóképességen alapuló antioxidáns kapacitás) és a DPPH (1,1-difenil-2-pikrilhidrazil gyök reakcióján alapuló) módszerekkel vizsgáltuk. A szerves sav- és a polifenolos összetételt kromatográfiás/ tömegspektrometriás eljárással határoztuk meg. Megállapítottuk, hogy a talajtakarási módszerek hatása az antioxidáns kapacitásra és a polifenol tartalomra erősen fajfüggő, valamint bizonyos talajtakarásokkal az antioxidáns tartalom szignifikánsan növelhető. Az eredmények hozzájárulnak az agrárerdészeti rendszerekben termelt gyógynövények kémiai összetételének kutatásához, és az adatok alapul szolgálhatnak a további fajokon végzett kísérletek tervezéséhez.

Letöltések

Letölthető adat még nem áll rendelkezésre.

Article Details

Hogyan kell idézni
Hofmann, T., Benke, D., & Visiné Rajczi, E. (2025). Agroerdészeti rendszerekben termelt mezei sóska (Rumex acetosa L.), lándzsás útifű (Plantago lancelota L.) és kis télizöld (Vinca minor L.) antioxidáns összetételének vizsgálata. Élelmiszervizsgálati Közlemények, 71(3), 23–39. https://doi.org/10.52091/EVIK-2025/3-3
Folyóirat szám
Rovat
Tanulmányok

Hivatkozások

Abbas, M.; Saeed, F.; Anjum, F. M.; Afzaal, M.; Tufail, T.; Bashir, M. S;,Ishtiaq, A.; Hussain, S.; Suleria, H. A. R. (2017): Natural polyphenols: An overview. International Journal of Food Properties. (20):8. pp.: 1689-1699. DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2016.1220393

Abreu, N.I.; Mazzafera, P. (2005): Effect of water and temperature stress on the content of active constituents of Hypericum brasiliense Choisy. Plant Physiol Biochem. (43) pp.:241–248. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2005.01.020

Aydinalp, C.; Cresser, M.S. (2008): The effects of global climate change on agriculture. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences. (3):5. pp.: 672-676. ISSN 1818-6769

Bae, J.Y.; Lee, Y.S.; Han, S.Y.; Jeong, E.J.; Lee, M.K.; Kong, J.Y.; Lee, D.H.; Cho, K.J.; Lee,H.S.; Ahn, M.J. (2012): A Comparison between Water and Ethanol Extracts of Rumex acetosa for Protective Effects on Gastric Ulcers in Mice. Biomolecules and Therapeutics. (20):4. pp.: 425-430. DOI: https://doi.org/10.4062/biomolther.2012.20.4.425

Bahadori, M.B.; Sarikurkcu, C.; Kocak, M.S.; Calapoglu, M.; Uren, M.C.; Ceylan. O. (2020): Plantago lanceolata as a source of health-beneficial phytochemicals: Phenolics profile and antioxidant capacity. Food Bioscience. (34) 100536. DOI: 10.1016/j.fbio.2020.100536

Beara, I.N.; Lesjak, M.M.; Orcic, D.Z.; Simin, N.D.; Cetojevic-Simin, D.D.; Bozin, B.N.; Mimica-Dukic, N.M. (2012): Comparative analysis of phenolic profile, antioxidant, anti-inflammatory and cytotoxic activity of two closely-related Plantain species: Plantago altissima L. and Plantago lanceolata L. Food Science and Technology. (47):1. pp.: 64-70. DOI: https://doi.org/10.1016/j.lwt.2012.01.001

Bello, O.M.; Fasinu, P.S.; Bello, O.E.; Ogbesejana, A.B.; Adetunji, C.O.; Dada, A.O., Ibitoye, O.S.; Aloko, S.; Oguntoye, O.S. (2019): Wild vegetable Rumex acetosa Linn.: Its ethnobotany, pharmacology and phytochemistry. South African Journal of Botany. (125). pp.: 149-160. DOI: https://doi.org/10.1016/j.sajb.2019.04.018

Benke, D.; Visiné Rajczi, E.; Hofmann, T. (2024): Antioxidant capacity of medical plants produced in agroforestry system. Acta Facultatis Forestalis Zvolen. (66):1. pp.: 35-47. ISSN 0231-5785

Benzie, I.F.F.; Strain, J.J. (1996): The Ferric Reducing Ability of Plasma (FRAP) as a Measure of ‘‘Antioxidant Power’’: The FRAP Assay. Analytical Biochemistry. (239). pp.: 70-76. DOI: https://doi.org/10.1006/abio.1996.0292

Calfapietra, C.; Gielen, B.; Karnosky B.; Ceulemans, B.; Mugnozza, G.S. (2010): Response and potential of agroforestry crops under global change. Environmental Pollution. (158). pp.: 1095-1104. DOI: https://doi.org/10.1016/j.envpol.2009.09.008

Caprile, A. (2022): New EU forest strategy for 2030. European Parliamentary Research Service. PE 698.936.

Chen, Q.; Lu, X.; Guo, X.; Guo, Q.; Li, D. (2017): Metabolomics Characterization of Two Apocynaceae Plants, Catharanthus roseus and Vinca minor, Using GC-MS and LC-MS Methods in Combination. Molecules. (22). 997. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules22060997

Ciorita, A.; Zagrean-Tuza, C.; Mot, A.C.; Carpa, R.; Parvu, M. (2021): The Phytochemical Analysis of Vinca L. Species Leaf Extracts Is Correlated with the Antioxidant, Antibacterial, and Antitumor Effects. Molecules. (26):10. 3040. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules26103040

de Jong, W.; Pokorny, B.; Katila, P.; Galloway, G.; Pacheco, P. (2018): Community Forestry and the Sustainable Development Goals: A Two Way Street. Forest. (9). 331. DOI: https://doi.org/10.3390/f9060331

den Herder, M.; Moreno, G.; Mosquera-Losada R.M.; Palma, J.H.N.; Sidiropoulou, A.; Frejanes J.J.S.; Crous-Duran, J.; Paulo J.A.; Tomé, M.; Pantera A.; Papanastasis V.P.; Mantzanas, K.; Pachana, P.; Papadopoulos, A.; Plieninger. T.; Burgess, P.J. (2017): Current extent and stratification of agroforestry in the European Union. Agriculture, Ecosystems and Environment. (241). pp.: 121-132. DOI: https://doi.org/10.1016/j.agee.2017.03.005

Dimitrescu A.M.; Stanciu, G.; Sirbu, R.; Busuricu, F. (2021): Spectrophotometric Studies of Indolic Compounds from Vinca Minor L. European Journal of Natural Sciences and Medicine. (4):1. pp.: 88-98. DOI: https://doi.org/10.26417/200exd50h

Ekor M. (2014): The growing use of herbal medicines: issues relating to adverse reactions and challenges in monitoring safety. Frontiers in pharmacology. (4). 177. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2013.00177

Feduraev, P.; Skrypnik, L.; Nebreeva, S.; Dzhobodze, G.; Vatagina, A.; Kalinina, E.; Pungin, A.; Maslennikov, P.; Riabova, A.; Krol, O.; Chupakhina, G. (2022): Variability of Phenolic Compound Accumulation and Antioxidant Activity in Wild Plants of Some Rumex Species (Polygonaceae). Antioxidants. (11). 311. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox11020311

Galato, D.; Ckless, K.; Susin, M. F.; Giacomelli, C.; Ribeiro-do-Valle, R. M.; Spinelli, A. (2001): Antioxidant capacity of phenolic and related compounds: correlation among electrochemical, visible spectroscopy methods and structure–antioxidant activity. Redox Report.(6):4. pp.: 243-250. DOI: https://doi.org/10.1179/135100001101536391

Grigore, A.; Bubueanu, C.; Pirvu, L.; Ionita, L.; Toba, G. (2015): Plantago lanceolata L. Crops- Source of valuable raw material for varios industrial applications. Scientific Papers. Series A. Agronomy. (58). pp.: 207-214. DOI: https://doi.org/10.5555/20153325237

Guil-Guerrero, J. L. (2001): Nutritional composition of Plantago species (P. major L., P. lanceolata L., and P. media L.). Ecology of food and nutrition. (40):5. pp.: 481-495. DOI: https://doi.org/10.1080/03670244.2001.9991663

Gustavsson, L.; Haus S.; Lundblad, M.; Lundström, M.; Ortiz, C.A.; Sathre, R.; Truong, N.L.; Wikberg, P.E. (2017): Climate change effects of forestry and substitution of carbon-intensive materials and fossil fuels. Renewable and Sustainable Energy Reviews. (67). pp.: 612-624. DOI: https://doi.org/10.1016/j.rser.2016.09.056

Guti, E. (2023): Összehasonlító mikroklíma vizsgálatok a bajti csemetekert köztestermesztéses agrárerdészeti rendszerében. Diplomamunka. Soproni Egyetem, Sopron. http://diploma.uni-sopron.hu/id/eprint/10764

Halliwell, B. (1990): How to characterize a biological antioxidant. Free Radical Research Communications. (9):1. pp.: 1-32. DOI: https://doi.org/10.3109/10715769009148569

Hegedűs, A.; Stefanovitsné, B.E. (2012): Természetes antioxidáns-forrásunk: a gyümölcs. Debrecen: Debreceni Egyetem, AGTC, Kertészettudományi Intézet. pp. 162. ISBN 9786155183263

Jantwal, A.; Durgapal, S.; Upadhyay, J.; Joshi, T.; Kumar, A. (2022): Tartaric acid. In: Antioxidants Effects in Health. (Eds.: Nabavi, S.M. & Silva, A.S.) Elsevier. pp.: 485-492. ISBN 978-0-12-819096-8 DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819096-8.00019-7

Irtegün Kandemir, S.; Aktepe, N.; Baran, A.; Baran, M.F.; Atalar, M.N.; Keskin, C.; Karadag, M.; Eftekhari, A.; Alma, M.H.; Zor, M.; Aliyeva, I.; Khalilov, R. (2024): Determination of chemical composition and antioxidant, cytotoxic, antimicrobial, and enzyme inhibition activities of Rumex acetosella L. plant extract. Chem. Pap. (78). pp.: 4583–4592. DOI: https://doi.org/10.1007/s11696-024-03419-0

Kárpáti, E.; Bíró, K.; Kukorelli, T. (2002): Investigation of vasoactive agents with indole skeletons at Richter Ltd. Acta Pharmaceutica Hungarica. (72):1. pp.: 25-36. PMID 12426785

Kaya, S.; Regab, C.; Morenoc, G.; den Herder, M.; Palmae, J.H.N.; Borekg, R.; Durane, J.C.; Freeseh, D.; Giannitsopoulosi, M.; Gravesi, A.; Jägerj, M.; Lamersdorfk, N.; Memedeminl, D.; Losadam, R.M.; Panteran, A.; Paracchinib, M.L.; Pariso P.; Díaza, J.V.R.; Roloc, V.; Rosatiq, A.; Sandorr, M.; Smiths, J.; Szerencsitsa, E.; Vargat, A.; Viaudu, V.; Wawerg, R.; Burgessi, P.J.; Herzoga, F. (2019): Agroforestry creates carbon sinks whilst enhancing the environment in agricultural landscapes in Europe. Land Use Policy. (83). pp.: 581-593. DOI: https://doi.org/10.1016/j.landusepol.2019.02.025

Kayashima, T.; Katayama, T. (2002): Oxalic acid is available as a natural antioxidant in some systems. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects. (1573):1. pp.: 1-3. DOI: https://doi.org/10.1016/s0304-4165(02)00338-0

Koel, M.; Kuhtinskaja, M.; Vaher, M. (2020): Extraction of bioactive compounds from Catharanthus roseus and Vinca minor. Separation and Purification Technology. (252). 117438. DOI: https://doi.org/10.1016/j.seppur.2020.117438

Kovács, K.; Vityi, A.; Szalay, D. (2019): Az agroerdészet szerepe az erdőfelújításban és a növekvő faanyagigény kielégítésében. Jelenkori Társadalmi és Gazdasági Folyamatok. (14):2. pp.: 59-63. DOI: https://doi.org/10.14232/jtgf.2019.2.59-63

Kovács, K.; Vityi, A. (2022): Soil and Atmospheric Microclimate Research in Poplar Forestry Intercropping System in Hungary. Acta Silvatica & Lignaria Hungarica, (18):1. pp.: 9-24. DOI: https://doi.org/10.37045/aslh-2022-0001

Li, J. J.; Li, Y.X.; Li, N.; Zhu, H.T.; Wang, D.; Zhang, Y.J. (2022): The genus Rumex (Polygonaceae): an ethnobotanical, phytochemical and pharmacological review. Natural Products and Bioprospecting. (12):1. pp.: 21. DOI: https://doi.org/10.1007/s13659-022-00346-z

Lu, Y.; Du, Y.; Qin, X.; Wu, H.; Huang, Y.; Cheng, Y.; Wei, Y. (2019): Comprehensive evaluation of effective polyphenols in apple leaves and their combinatory antioxidant and neuroprotective activities. Industrial Crops and Products. (129):7. pp.: 242-252. DOI: https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2018.12.013

Lundgren, B.O.; Raintree, J.B. (1983): Sustained Agroforestry. Reprint for International Council for Research in Agroforestry. (3). pp.: 26.

Mämmela, P. (2001): Phenolics in selected European hardwood species by liquid chromatographyelectrospray ionisation mass spectrometry. Analyst. 126. pp.: 1535-1538. DOI: https://doi.org/10.1039/b104584a

Mondal, R.; Negi, A.; Mishra, M. (2021): Morphoanatomical, Histochemical Characterization & Preliminary Phytochemical Studies of Plantago major L. IJRAR. (8):3. pp.: 823-860. E-ISSN 2348-1269, P- ISSN 2349-5138

Nazaruk, J. (2008): Antioxidant activity and total phenolic content in Cirsium five species from north–east region of Poland. Fitoterapia. (79): 3. pp.: 194-196. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fitote.2007.11.008

Nichita, C.; Neagu, G.; Cucu, A.; Vulturescu, V.; Bertesteanu S.V.G. (2016): Antioxidative properties of Plantago lanceolata L. extracts evaluated chemiluminescence method. AgroLife Scientific Journal. (5):2. pp.: 95-102. ISSN 2285-5718

Nuwarapaksha, T. D.; Udumann, S. S.; Dissanayaka, N. S.; Atapattu, A. J. (2025): Future Prospects and Emerging Trends in Agroforestry Research. In: Agroforestry for a Climate-Smart Future. (Eds.: Atapattu, A.) IGI Global Scientific Publishing. pp. 497-518. DOI: https://doi.org/10.4018/979-8-3693-8282-0.ch017

Pan, S.Y.; Litscher, G.; Gao, S.H.; Zhou, S.F.; Yu, Z.L.; Chen, H.Q.; Zhang, S.F.; Tang, M.K.; Sun, J.N.; Ko, K.M. (2014): Historical Perspective of Traditional Indigenous Medical Practices: The Current Renaissance and Conservation of Herbal Resources. Evidence-based complementary and alternative medicine. 525340. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/525340.

Pankoke, H.; Müller, C. (2013): Impact of defoliation on the regrowth capacity and the shoot metabolite profile of Plantago lanceolata L. Plant physiology and biochemistry. (71). pp.: 325-333. DOI: https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2013.07.016

Pol, M.; Schmidtke, K.; Lewandowska, S. (2021): Plantago lanceolata – An overview of its agronomically and healing valuable features. Open Agriculture. (6). pp.: 479-488. DOI: https://doi.org/10.1515/opag-2021-0035

Pol, M.; Potterat, O.; Tröber, F.; Lewandowska, S.; Schmidtke, K. (2024): Rooting Patterns and Aucubin Content in Plantago lanceolata. Agriculture. (14). 1352. DOI: https://doi.org/10.3390/agriculture14081352

Rasouli, H.; Farzaei, M. H.; Khodarahmi, R. (2017): Polyphenols and their benefits: A review. International Journal of Food Properties. (20):2. pp.: 1700-1741. DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2017.1354017

Rigueiro-Rodríguez, A.; McAdam, J.; Mosquera-Losada, M.R. (2008): Agroforestry in Europe: Current Status and Future Prospects. Springer, Dordrecht. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4020-8272-6

Sanchísa, F.M.; Bello, M.L.F. (2009): Climate change and its marginalizing effect on agriculture. Ecological Economics. (68). pp.: 896-904. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecolecon.2008.07.015

Sawada, Y.; Nakabayashi, R.; Yamada, Y.; Suzuki, M.; Sato, M.; Sakata, A.; Saito, K. (2012): RIKEN tandem mass spectral database (ReSpect) for phytochemicals: a plant-specific MS/MS-based data resource and database. Phytochemistry. (82). pp.: 38-45. DOI: https://doi.org/10.1016/j.phytochem.2012.07.007

Sezer, E.N.S.; Uysal, T. (2018): Volatile and Phenolic Compositions of the Leaves of Two Vinca L. Species from Turkey. Current Perspectives on Medicinal and Aromatic Plants. (2). pp.: 103-110.

Siener, R.; Hönow, R.; Seidler, A.; Voss, S.; Hesse, A. (2006): Oxalate contents of species of the Polygonaceae, Amaranthaceae and Chenopodiaceae families. Food Chemistry. (98):2. pp.: 220-224. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2005.05.059

Simon T.; Csapody V. (1991): Kis növényhatározó rendszertani és ökológiai tájékoztatóval. Tankönyvkiadó, Budapest.

Singh, S. K.; Kaldate, R.; Bisht, A. (2022): Citric acid, antioxidant effects in health. In: Antioxidants Effects in Health. (Eds.: Nabavi, S.M. & Silva, A.S.) Elsevier. pp.: 309-322. ISBN 978-0-12-819096-8. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-12-819096-8.00045-8

Stewart, A.V. (1996): Plantain (Plantago lanceolata) – a potential pasture species. Journal of New Zealand Grasslands. (58). pp.: 77-86. DOI: https://doi.org/10.33584/jnzg.1996.58.2221

Szigeti, N.; Frank, N.; Vityi, A. (2020): The Multifunctional Role of Shelterbelts in Intensively Managed Agricultural Land – Silvoarable Agroforestry in Hungary. Acta Silvatica & Lignaria Hungarica, (16):1. pp.: 19–38. DOI: https://doi.org/10.37045/aslh-2020-0002

Szigeti, N.; Berki, I.; Vityi, A.; Winkler, D. (2021): The Role of Grassy Habitats in Agroforestry. Acta Silvatica & Lignaria Hungarica, (17):2. pp.: 65–82. DOI: https://doi.org/10.37045/aslh-2021-0005

Tálos-Nebehaj, E. (2017): Antioxidáns paraméterek vizsgálata a Magyarországon előforduló erdei fafajok levél- és kéregszövetében. Doktori (PhD) értekezés. Soproni Egyetem, Sopron.

Tita, I.; Mogosanu, G.D.; Tita, M.,G. (2009): Ethnobotanical inventory pf medicinal plants from the southwest of Romania. Farmacia. (57):2. pp.: 141-156.

Torralba, M.; Fagerholm, N.; Burgess, P.J.; Moreno, G.; Plieninger, T. (2016): Do European agroforestry systems enhance biodiversity and ecosystem services? A meta-analysis. Agriculture, Ecosystems and Environment. (230). pp.: 150-161. DOI: https://doi.org/10.1016/j.agee.2016.06.002

Tuazon-Nartea, J.; Savage, G.P. (2013): Investigation of oxalate levels in sorrel plant parts and sorrelbased products. Food and Nutrition Sciences. (4):8. pp.: 838-843. DOI: https://doi.org/10.4236/fns.2013.48109

Van Wyk B.E.; Wink M. (2004): Medicinal Plants of the World: An Illustrated Scientific Guide to Important Medicinal Plants and Their Uses. Timber Press, Portland. Oregon. ISBN 0-88192-602-7

Visiné Rajczi, E.; Benke, D.; Hofmann T. (2024): Talajtakarás és árnyékolás hatása lágyszárúak antioxidáns kapacitására egy agrárerdészeti rendszerben. Georgikon for Agriculture. (28):2. pp.: 185–190. HU ISSN 0239 1260

Vityi, A.; Kiss-Szigeti, N.; Kovács K. (2018): Az agrárerdészet magyarországi helyzete. Kutatások a 210 éves Erdőmérnöki Karon. Soproni Egyetem, Erdőmérnöki Kar, Erdészeti-műszaki és Környezettechnikai Intézet, Sopron.

Watson, R. R. (2018): Polyphenols in plants: isolation, purification and extract preparation. Academic Press. ISBN: 9780128137680

Wegiera, M.; Grabarczyk, P.; Baraniak, B.; Smolarz, H.D. (2011): Antiradical properties of extracts from roots, leaves and fruits of six Rumex L. species. Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica. (53):1. pp.: 125-131. DOI: https://doi.org/10.2478/v10182-011-0018-z

Wijngraard, H.H.; Rößle, C.; Brunton, N. (2009): A survey of Irish fruit and vegetable waste and byproducts as a source of polyphenolic antioxidants. Food Chemistry. (116):1. pp.: 202-207. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2009.02.033

Willmott, A.; Willmott, M.; Grass, I.; Lusiana, B.; Cotter, M. (2023): Harnessing the socio-ecological benefits of agroforestry diversification in social forestry with functional and phylogenetic tools. Enviromental Development. (47). 100881. DOI: https://doi.org/10.1016/j.envdev.2023.100881

Ye, K.Y.; Yastreb, T.O.; Miroshnichenko, N.N. (2011): Influence of salicylic and succinic acids on antioxidant enzymes activity, heat resistance and productivity of Panicum miliaceum L. Journal of Stress Physiology & Biochemistry. (7):2. pp.: 154-163. ISSN 1997-0838

Young, I.S.; Woodside, J.V. (2001): Antioxidants in health and disease. Journal of Clinical Pathology. (54). pp.: 176-186. DOI: https://doi.org/10.1136/jcp.54.3.176

Zhang, Y.; Yang, S.H.; Guo, X.L. (2017): New insights into Vinca alkaloids resistance mechanism and circumvention in lung cancer. Biomedicine and Pharmacotherapy. (96). pp.: 659-666. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.10.041

Zubay, P.; Ruttner, K.; Ladányi, M.; Deli, J.; Németh, Z.É. (2021): In the shade – Screening of medicinal and aromatic plants for temperate zone agroforestry cultivation. Industrial Crops & Products. (170). 113764. DOI: https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2021.113764

Internetes hivatkozások:

URL 1: https://www.fortunebusinessinsights.com/herbal-medicine-market-106320. Letöltve: 2025.06.18.